Публикации | 1998 | 1999 | 2000 | 2001 | 2002 | 2003 | 2004 | 2005 | 2006 |

-2006-

1. С.Н.Куликов, Ф.К.Алимова, Н.Г.Захарова, С.В.Немцев, В.П.Варламов.

Биопрепараты с разным механизмом действия для борьбы с грибными болезнями картофеля. (2006). Прикладная биохимия и микробиология Т. 42, № 1, с.86-92. 

Микологический анализ на протяжении всего периода вегетации картофеля Solanum tuberosum L. позволил детально изучить структуру сообщества микромицетов, выявить типично доминирующие (частота встречаемости более 60%), типично частые (от 30 до 60%), типично редкие (от 10 до 30%) и случайные (менее 10%) виды и оценить  изменения в сообществе микроорганизмов при использовании средств защиты растений с различным механизмом действия. Показано, что эффективность синтетических средств (ТМТД, Ридомил голд МЦ, Куприкол) против грибных патогенов картофеля, вследствие появления резистентных форм, незначительно превышала аналогичные показатели биопрепаратов (Триходермин, АгроХит), при этом существенно изменялось естественное сапрофитное микологическое сообщество. Увеличение почвенного пула Trichoderma harzianum при использовании биологического препарата на основе этого гриба-антагониста коррелировало с его эффективностью против почвенного патогена Fusarium sp., вызывающего корневые гнили. Элиситорный препарат на основе хитозана в большей степени сдерживал развитие ранней (Alternaria sp., Macrosporium sp.) и поздней (Phytophthora sp.) пятнистостей листьев и в меньшей степени влиял на почвенную микрофлору. 

2. С.Н.Куликов, С.Н.Чирков, А.В.Ильина, С.А.Лопатин, В.П.Варламов.

Влияние молекулярной массы хитозана на его противовирусную активность в растениях. (2006). Прикладная биохимия и микробиология Т. 42, № 2, стр.224-228

Изучали влияние молекулярной массы хитозана на его способность подавлять системную инфекцию вируса мягкой мозаики фасоли в растениях фасоли Phaseolus vulgaris L. Ферментативный гидролизат низкомолекулярного хитозана последовательно фракционировали ультрафильтрацией через  мембраны с уменьшающимся размером пор. Получено 4 фракции хитозана со средневесовой  молекулярной массой от 1,2 до 40,4 кДа.  Показано, что обработка растений фасоли растворами этих фракций с концентраций хитозана 10 или 100 мкг/мл ведет к ингибированию накопления и системного распространения вируса. Степень противовирусной устойчивости, индуцированной хитозаном, возрастала с  уменьшением молекулярной массы хитозана. Мономеры – глюкозамин и N-ацетилглюкозамин – противовирусной активностью не обладали.

3.    Н.А. Андрианова, Л.А. Смирнова, Ю.Д. Семчиков, К.В. Кирьянов, Н.В. Заборщикова, В.Ф. Урьяш, Н.В. Востоков.

Синтез цианэтиловых производных хитозана.  (2006). Высокомолек. соед. А. ,  Т. 48, № 5, С. 771-777. 

По реакции нуклеофильного присоединения акрилонитрила к функциональным группам хитозана синтезированы его цианэтиловые производные с различной степенью замещения. Процесс протекает в гомогенных условиях без катализатора при разных значениях рН среды, концентрациях реагентов в интервале температур 273-333 К. Образование цианэтилхитозанов доказано по приращению массы хитозана, изменению содержания в нем азота и появлению в ИК-спектре полосы поглощения при 2250 см-1, отвечающей валентным колебаниям группы –С ºN. Установлено, что наиболее эффективно присоединение акрилонитрила протекает при 273 К и рН 5.5. Образцы цианэтилхитозана имеют более высокие физико-механические показатели и характеризуются меньшей упорядочностью структуры по сравнению с исходным хитозаном.

4.   М.С. Золоторева.

Технология концентрирования белков творожной сыворотки и их использование в производстве кисломолочных напитков.   . (2006).  Дисс. кандидата технических наук, Ставрополь, ГОУ ВПО СевКавГТУ.

В том числе теоретически обоснована и экспериментально доказана возможность использования водорастворимой формы природного полисахарида хитозана для концентрирования белков творожной сыворотки. Изучены свойства растворов сукцината ъхитозана и подобраны наиболее оптимальные концентрации для процесса разделения творожной сыворотки на белковую и безбелковую фракции.  

5. А.В. Ильина, В.П. Варламов.

Галактозилированные производные низкомолекулярного хитозана.  (2006). Прикладная биохимия и микробиология,  Т.42,  №5,  С.

Методом активированных N-оксисукцинимидных эфиров с использованием лактобионовой кислоты получены галактозилированные производные низкомолекулярного хитозана со СЗ 8-23% и исследованы их свойства (вязкость, растворимость, биодеградируемость).

6.   Л.А. Нудьга.

Структурно-химическая модификация хитина, хитозана и хитин-глюкановых комплексов. (2006).  Дисс. доктора  хим. наук, Санкт-Петербург,  Институт ВМС РАН.

Разработаны и экспериментально проверены принципы структурной и химической модификации хитина, хитозана и хитин-глюкановых комплексов путем введения непредельных и насыщенных алкильных заместителей и получения гибридных полимеров. Изучены закономерности алкилирования хитозана и хитин-глюкановых комплексов.  Исследованы реакции привитой полимеризации мономеров различного типа на хитозан и аллилхитозан и установлен их механизм. Предложен и экспериментально проверен способ структурной модификации хитина путем введения малых добавок других полисахаридов или поливинилпирролидона.

7.   V.E. Tikhonov, E.A. Stepnova, V.G. Babak, I.A. Yamskov, J. Palma-Guerrero, H-B. Jansson,  L.V. Lopes-Llorea, J.Salinas, D.V. Gerasimenko, I.D. Avdienko, V.P. Varlamov.

Bactericidal and antifungal activities of low molecular weight chitosan and its N-2/(3)-(dodec-2-enyl)succinoyl/-derivatives. (2006). Carbohydr. Polymers, V.64,   № 1, P. 66-72.

Low molecular weight chitosan (4.6 kDa) and N-2/(3)-(dodec-2-enyl)succinoyl/-derivatives of different degrees of substitution were tested for their antimicrobial activity against Escherichia coli, Pseudomonas aureofacienss, Enterobacter agglomerans, Bacillus subtilis,Candida kruisei and  Fusarium oxysporum.  The resalts indicated that the chitosan show high activities against all bacteria, yeast and filamentous fungus.

8.   Р.Р. Утеушев.

Разработка технологии комплексной переработки панцирьсодержащего сырья из ракообразных Волго-Каспийского региона. (2006).  Дисс. кандидата технических наук, Москва, Астраханский государственный технический университет.

Разработана технология комплексной переработки ПСС из речных раков Волго-Каспийского региона, позволяющая получить хитин, кормовую белковую добавку, концентрата каратиноидов и других продуктов, образующихся при производстве хитина. Кроме того выявлено, что хитозан, полученный из хитина речных раков, характеризуется М.м. 630 кДа и СДА 82-83%.

9.   Р.Р. Утеушев,  М.Д. Мукатова.

Хитин из панцирьсодержащих отходов речных  раков  Волго-Каспийского региона. (2006). Рыбная промышленность,   № 1 ,  С.16-18. 

10. В.П. Курченко, Т.А. Кукулянская, И.И.Азарко, О.Ю. Зуева, Р.Г.Хисматуллин, В.П.Варламов

 "Физико-химические свойства хитин-меланинового и меланопротеинового комплексов из подмора пчел", Прикладная биохимия и микробиология,(2006), том 42, № 3, стр. 374-378

Разработана технологическая схема переработки подмора пчел и получения хитин-меланинового и меланопротеинового комплексов. Полученные комплексы биополимеров исследованы методами адсорбционной спектроскопии, спектроскопии электронного парамагнитного резонанса, термогравиметрии и дифференциальной сканирующей калориметрии.